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內容概述：本研究提出了一種將Cas12bsgRNA 拆分為兩個片段（即“分裂 sgRNA”）的策略。該策略利用通用骨架結構與可定制的 Spacer 區域相結合，實現了對 Cas12b 切割活性的精確調控。同時，此方法支持無需核酸擴增的 microRNA 直接檢測。研究結果表明，通過優化 sgRNA 結構可有效降低脫靶效應并抑制背景切割信號，從而構建了一個具有高靈敏度和高特異性的 microRNA 檢測平臺。

研究背景

在基因編輯和核酸檢測領域，Cas12b是一種極具潛力的 CRISPR-Cas 系統。然而，傳統 sgRNA 設計易引發背景切割和脫靶效應，需更精細的活性調控策略。同時，作為重要生物標志物的 microRNA，其檢測面臨濃度低、結構復雜等挑戰。為此，本研究旨在開發一種新型 sgRNA 架構，在實現對 Cas12b 活性精準調控的同時，支持無需擴增的 microRNA 直接檢測。

實驗方法與過程

• sgRNA 分裂設計：將 sgRNA 拆分為 scaffold 部分與 Spacer 部分分別表達或組裝。

• 活性調控評估：通過體外Cas12b 切割實驗驗證不同組合，測定切割效率與背景活性。

• microRNA 檢測方案建立：結合報告片段和熒光信號輸出，無需逆轉錄擴增即可檢測目標 microRNA。

• 靈敏度與特異性測試：在多種microRNA 濃度梯度中測試檢測下限與選擇性。

  
  

Cas12b的sgRNA和分裂sgRNA的方案概述

實驗結果

• 活性調控：成功拆分sgRNA 顯著降低 Cas12b 的非特異背景切割，僅在配對正確 Spacer 后激活強信號。

• 高靈敏檢測：檢測下限達到picomolar 級別，背景噪音較低。

• microRNA 特異性良好：能區分近似序列差異較小的 microRNA，通過 Spacer 定制即可切換檢測目標。

  
  

結論

split sgRNA 的設計具備普適性，只需更換 Spacer 即可擴展至不同 microRNA 或 DNA 靶標，且無擴增的檢測方法可以簡化流程、降低成本與污染風險。該平臺具備潛力推廣至臨床快速診斷設備或現場檢測（POCT）應用。未來可與納米載體、光學傳感設備等結合，提升整體檢測便利性與應用范圍。

使用改良的CRISPR-Cas12b 系統檢測 miR-17、21、31 和 92a 的表達量

使用同樣的檢測方法檢測健康人（H.D.1–5）、結直腸癌患者術前（P.D.1–5 preO） 和 術后（P.D.1–5 postO） 血漿總 RNA 中的 miR-17、21、31 和 92a 水平

Cas12b split sgRNA 方法 與傳統 RT-qPCR 方法對比

論文中用到的NEST產品

胎牛血清

實驗：細胞培養

涉及細胞類型：HCT116,SW480, NCM460

在本實驗中，研究人員使用含FBS的培養基分別培養了結直腸癌細胞系 HCT116、SW480 及正常腸上皮細胞系 NCM460，并從中提取 microRNA。隨后，他們利用開發的 split sgRNA-Cas12b 方法檢測了 miR-17、miR-21、miR-31 和 miR-92a，并與傳統 RT-qPCR 結果進行對比。結果顯示，癌細胞中 microRNA 表達量顯著高于正常細胞，兩種方法結果高度一致。此外，還檢測了結直腸癌患者術前術后及健康人群血漿中的 microRNA 水平，驗證了其在腫瘤診斷和術后監測中的應用潛力。

NEST胎牛血清的優勢

NEST胎牛血清是從牛胎中抽取的血液凝固后剩余的液體部分，通過離心去除細胞、凝固纖維蛋白原和蛋白以得到血清，含有許多有助于細胞生長的成分，包括：如生長因子、附著因子、激素、轉運蛋白、脂質、糖類、維生素等。